染色时间需要什么配置,染色时间需要什么配置的

游戏攻略 2026-01-29 23
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  1. 0.1结晶紫染色液怎么配制?
  2. 1%番红染液怎么配?
  3. dna染色液的配制?

0.1结晶紫染色液怎么配制?

草酸铵结晶紫染液的配制: 溶液A 溶液B 结晶紫 2克

95%酒精 20毫升 草酸铵 0.8克

蒸馏水 80毫升 1.将A、B溶液混合,用滤纸过滤后即可使用。

2.结晶紫滴一滴即可,不需多用,以避免污染桌面及手指。

结晶紫染色法测定细胞数

1.在96孔细胞培养板各孔中加0.1ml含5×104~10×4 WEHI-164细胞的培养液(含10%小牛血清的RPMI-1640培养液),37℃ 5% CO2的二氧化碳培养箱中培养2~3小时,让细胞帖壁。

2.用RPMI-1640培养液10倍递次稀释TNF标准品,根据需要3~5倍递次稀释待检样品,每孔加0.1ml稀释的标准品或待检样品,每个稀释度3个重复孔。对照孔6个,3个阳性对照孔各加0.1ml含4μg TNF的RPMI-1640培养液,3个阴性对照孔各加100μl RPMI-1640培养液。继续培养18~24小时。

3.甩去培养液,用PBS小心洗涤一次,每孔加0.1ml 10%甲醇溶液固定细胞30秒钟。

4.吸去甲醇溶液,每孔加0.1ml结晶紫染液,室温中放置20分钟。

5.轻轻甩去染色液,用蒸馏水洗涤各孔,将培养板倒置于吸水纸上吸干水分。自然干燥或37℃烘干。此板可以在室温中长期保存。

6.测定前,每孔加0.1ml 33%醋酸脱色,充分振荡后在570nm处测定光吸收度。用光吸收度(OD)值对样品稀释度作图,比较标准品曲线和待检样品曲线即可得到待测样品中的细胞因子活性

1%番红染液怎么配?

这个是革兰氏染色液的两种主要试剂,常规配法如下,如果用量少可以订购现成的,用量大自己配合算。

(1)结晶紫(crystal violet)液:结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL,1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。(4)番红溶液:番红O(safranine,又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL,溶解后可贮存于密闭的棕色瓶中,用时取20mL与80mL蒸馏水混匀即可。

dna染色液的配制?

dna染色液的配制方法如下:

1 配制提取液之前,先配制母液。

母液(灭菌):5M NaCl ( 58.4g加ddH 2 O制成200ml溶液)

0.5M Na 2 -EDTA(37.22g+ddH 2 O至200ml,用NaOH调pH值为8.0)

1M Tris-HCl(12.11gTris-HCl+ ddH 2 O至100ml,用浓盐酸调pH值至8.0)

2 提取液配方

100ml

加入:CTAB粉剂 2g

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1M Tris(pH8.0) 10ml

0.5M EDTA(pH8.0) 4ml

5M NaCl 28ml

PVP 1g

β-巯基乙醇 1ml

加双蒸水定容至100ml

3 抽提液

分别量取苯酚、氯仿、异戊醇按25:24:1的体积比混合,再分别量取氯仿、异戊醇按24:1的体积比混合,配制成两种抽提液,各配制100ml

4 0.1xTE

1mlTris,20µl EDTA中加H 2 O, 用HCl调pH至8.0, 定溶,灭菌

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